無論是進行cDNA合成還是進行PCR擴增，均可通過方便的一步法方案進行。我們的一步法RT-PCR試劑盒含有dNTP及反轉錄酶和熱穩定性熱啟動DNA聚合酶的混合物，三者存在于佳的反應緩沖液中。只需加入您的RNA樣品及基因特異性引物，即可開始您的反應.
PCR反應的影響因素
變性溫度與時間：模板變性溫度是決定PCR反應中雙鏈DNA解鏈的溫度，達不到變性溫度就不會產生單鏈DNA模板，PCR也就不會啟動。變性溫度低則變性不*，DNA雙鏈會很快復性，因而減少產量。變性溫度太高，又會影響酶的活性。一般情況下可設為94℃ 20~30秒，高溫時間應盡量縮短，以保持耐熱DNA聚合酶的活力，zui高變性溫度不宜超過95℃。
退火溫度與時間：退火溫度決定PCR特異性與產量。溫度高特異性強，但過高則引物不能與模板牢固結合，DNA擴增效率下降；溫度低產量高，但過低可造成引物與模板錯配，非特異性產物增加。合適的退火溫度一般在45~68℃之間。設置特定反應的zui適退火溫度，可根據引物的(G+C)%含量進行推測，一般實驗中退火溫度比擴增引物的熔解溫度Tm低5℃，退火時間一般為30~60秒，足以使引物與模板之間*結合，長時間退火沒有必要。
延伸溫度與時間：PCR反應的延伸溫度一般選擇在70~75℃之間，延伸時間根據所用聚合酶擴增速度和擴增片段大小設定，如同樣擴增2 Kb片段，若使用Taq酶只需1分鐘，使用Pfu酶則應設定2分鐘以上。延伸時間過長會導致非特異性擴增帶的出現，時間太短則可能得不到擴增產物或得到一些短的非特異性片段。
PCR試劑盒循環次數：可根據模板DNA的量、擴增片段的大小和擴增產物的下步應用等因素，設定20-40個循環。循環次數太少，擴增量不足，如果循環次數太多，錯配幾率會增加，非特異性背景嚴重。所以，在保證產物得率的前提下，應盡量減少循環次數。
酶量：50 μL反應體系可用0.5-5 U酶，酶量的選擇與模板DNA的量，擴增片段大小等有關，酶量過多易發生非特異性反應，而且可能增加突變的機率，尤其在進行高保真擴增時，應盡量減少酶量，但酶量過少時反應性能下降。
模板：模板可以是單鏈DNA，也可以是雙鏈DNA，質粒DNA的擴增效率略低于線狀DNA。模板加量一般不需太多，不超過1 μg為宜，因為加量過多可能導致非特異性擴增增加，但是要考慮模板中靶序列的含量。例如，使用基因組為模板擴增單拷貝或低拷貝靶序列，就需要適當加大模板用量。
?引物：引物與模板配對的長度應至少為17個核苷酸，zui高不宜超過30個核苷酸，*長度為20~24個核苷酸，如需插入酶切位點，應在酶切位點5’端多加幾個堿基，有利于酶切。引物的(G+C)%含量組成應均勻，盡量避免含有相同的堿基多聚體。兩個引物中(G+C)%含量應盡量相似。引物內部應避免形成明顯的次級結構，如發夾結構。兩個引物之間不應發生互補，特別是在引物3’端。如果可能，引物3’端富有GC，這樣退火后有利于引物3’端的延伸。人工合成的引物經過色譜層析純化或PAGE純化，以除去未能合成至全長的短鏈等雜質。引物的終濃度一般為0.1-2 μM左右，濃度太高會導致非特異性擴增，太低則擴增產物太少。
