檢測原理亮白曲霉
細胞發生凋亡或壞死，其細胞DNA均發生斷裂，細胞內小分子量DNA斷增加，高分子DNA減少，胞質內出現DNA斷。但凋亡細胞DNA斷裂點均有規律的發生在核小體之間，出現180－200bpDNA斷，而壞死細胞的DNA斷裂點為無特征的雜亂片斷，利用此特征可以確定群體細胞的死亡，并可與壞死細胞區別，細胞繁殖以分裂方式進行。細胞作為一個獨立生命單位，既有生長繁殖，也有衰老死亡。細胞衰老是生物有機體衰老的基礎。在多細胞生物的個體發育過程中，細胞常常分化成各種構造和功能不同的細胞，如肌細胞、紅細胞和神經細胞等都屬于高度分化的細胞。當細胞發生癌變時，細胞便喪失其原來正常的功能，并無休止地分裂，形成腫瘤。
亮白曲霉操作方法
固定 | 培養細胞的制片或冰凍切片用4%多聚甲醛固定30min(4℃)后，用80%酒精再固定2h（-20℃）。常規4%中性福爾馬林固定、石蠟包埋之切片進行脫蠟、水化。 |
洗滌 | 玻片浸入PBS緩沖液，搖床上洗滌5min，三次。 |
反應 | 洗滌后的玻片用吸水紙吸干細胞或組織周圍水分，按50μl/cm2滴加反應液（每50μL反應液含TdT酶0.5μL,標記的-dUTP 1μL），使反應液均勻地覆蓋于所有細胞或組織切片上，蓋上塑料蓋玻片，置濕盒中，37℃孵育1h。 |
終止反應 | 去掉塑料蓋玻片，將玻片置盛有洗滌緩沖液的染色缸內，洗滌兩次，每次5min。 |
FITC標記 | 洗滌后的玻片用吸水紙吸去細胞或組織周圍水分，按50μl/cm2滴加FITC反應液（含FITC 2.5μg/mL），室溫下避光孵育10min。 |
洗滌 | 將玻片置于洗滌緩沖液內，洗兩次，每次5min。 |
PI復染 | 將玻片置于盛有PI染液的染色缸內，室溫下避光染色30min。 |
封片 | 用蓋玻片直接蓋在含PI染液的玻片上，亦可用無色指甲油涂于蓋玻片四周邊緣，置暗盒中，盡早鏡檢觀察。 |
交貨時間 | 15~20天 |
傳代：
1.培養皿中的細胞覆蓋率達到80%-90%時要傳代。
2.把原有培養基吸掉。
3.加適當的*(能覆蓋細胞就行)，消化1-2分鐘。
4.細胞都變圓后加如入等體積的含血清的培養基終止消化。
5.用移液槍吹打細胞，把細胞都懸浮起來。
6.把細胞吸到15ml的離心管中，1000轉離心5分鐘。
7.倒掉上清液，加1-2ml培養基，把細胞都吹起來。
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